Журнал туберкулез и болезни легких импакт фактор

Правила для авторов

1. Для публикации в журнале «Туберкулез и болезни легких» статья в электронном виде должна быть отправлена на почту tbl2015@yandex.ru и дополнительно оригиналы статей могут быть высланы по адресу: 127473, Москва, ул. Достоевского, д. 4, НИИ фтизиопульмонологии (журнал «Туберкулез и болезни легких»).

2. Статья должна быть написана на русском языке, напечатана через 2 интервала с шириной полей 2,5 см, шрифт – Times New Roman, размер – 12 пунктов.

3. В оригинальной статье не должно быть более 6 авторов (кроме многоцентровых клинических исследований). Размер статьи, включая рисунки, литературу, резюме и ключевые слова, не должен превышать 16 страниц. Не
принимаются к печати сообщения по незавершенным или планируемым исследованиям.

4. В выходных данных указываются: а) название работы; б) инициалы и фамилии авторов; в) название учреждения и отдела (кафедры, лаборатории), в котором выполнена работа; г) город; д) страна.

5. Заглавие статьи должно быть сформулировано возможно кратко, но без сокращений.

6. Необходимо предоставлять сведения о каждом авторе, которые прилагаются к статье на отдельном листе:

1) фамилия, имя, отчество;

2) должность; место работы

3) полный служебный почтовый адрес (с почтовым индексом)

4) адрес электронной почты

5) номер служебного телефона.

7. Статья должна быть подписана всеми авторами.

8. Обязательно должна быть указана фамилия, имя, отчество автора, с которым редакция будет вести переписку, его адрес (с почтовым индексом), телефон и электронная почта.

9. Материал публикации должен быть изложен в определенной последовательности с обязательным выделением в тексте следующих разделов:

• Введение. Кратко представляется со ссылками на источники литературы состояние проблемы, только по выбранной Вами теме, сформулированной в цели исследования.

• Цель исследования. Формулируется кратко и конкретно.

• Материалы и методы. Излагаются методики исследования без подробного описания, если они общеприняты (со ссылкой на источники литературы), но с указанием модификаций. Если они введены авторами статьи, необходимо точно описать применяемые воздействия: их вид, дозы, температуру, силу, длительность и т. д. Единицы измерения следует указывать в системе СИ.
При описании материала необходимо учитывать этические требования, пользоваться только принятыми классификациями и указывать все элементы лабораторных, экспериментальных и клинических работ (например, должны быть указаны все элементы лечебного комплекса, дозировки препаратов). Следует назвать конкретные статистические методы, используемые в данной работе.

• Результаты исследования. Излагаются в свободной форме. Приветствуется наличие таблиц, диаграмм, рисунков, облегчающих восприятие материала. Таблица и/или рисунок, не дублируя друг друга, должны заменять часть текста статьи. Необходимы статистическая обработка результатов и использование приемов доказательной медицины. Цифровые данные результатов исследований приводятся в абсолютных и относительных величинах (например 15/60 (25%)). Не следует сообщать о необходимости продолжать исследование или о незаконченных или запланированных исследованиях.

• Выводы или заключение. Должны в краткой форме представлять только те данные, которые были изложены в статье. Недопустимо появление новых цифр и сведений, не содержащихся в предыдущих разделах.

10. Таблицы должны быть компактными, иметь номер и название, столбцы и строки должны быть названы согласно содержащимся в них данным, обязательна их статистическая обработка. При использовании в таблице сокращений, не упомянутых в статье, или символов (*, ** и т. п.) смысл их объясняется в примечании под таблицей. В тексте статьи должны быть ссылки на таблицы.

11. Все используемые формулы должны быть четко написаны с использованием символов, прописных и строчных букв, показателей степени и т. п.

12. В тексте не допускаются сокращения, кроме единиц измерения, которые следует давать только в системе единиц СИ (кг, г, м, см, мм, л, мл, В, Вт, МА, Ки и т. п.).

13. К статье может быть приложено минимальное количество цветных рисунков (фото, графики, диаграммы) в электронном виде. В тексте статьи должна быть на них ссылка, а на отдельном листе следует дать подрисуночные подписи. Рисунки необходимо присылать в редакцию отдельными файлами в форматах TIFF, JPEG, PNG максимального имеющегося качества.

14. Статья должна содержать список литературы, включающий все упомянутые в ее тексте публикации. Библиографические ссылки в тексте статьи (обзора) должны даваться в квадратных скобках номерами, соответствующими списку литературы, который формируется в алфавитном порядке (сначала отечественные, затем зарубежные авторы, в транскрипции оригинала): фамилия и инициалы автора, должны быть указаны все авторы данной публикации далее:

• для статей в журналах: название статьи, название журнала, год, том, выпуск, страница;

• для книг и сборников: название (по титульному листу), место (издательство) и год издания, количество страниц;

15. К публикации (исключая информационные сообщения) должно быть приложено резюме. Текст резюме излагается четко и кратко, размер — не более 20 строк. Оформление: инициалы и фамилия авторов, название статьи, текст резюме.

Текст резюме должен быть структурирован: цель исследования; материалы и методы; полученные основные результаты.

16. К статье автором должны быть составлены ключевые слова (от 3 до 8 слов или словосочетаний), несущих в тексте основную смысловую нагрузку.

17. Для публикации в журнале, кроме оригинальных статей, принимаются литературные и аналитические обзоры, лекции, информационные и исторические сообщения, клинические наблюдения.

18. Направление в редакцию работ, уже опубликованных или отправленных в другие журналы, не допускается.

19. Редакция оставляет за собой право сокращать авторский текст и объем демонстрационных приложений (рисунки, графики и т.п.) и вносить в него редакторские изменения, не искажающие смысл статьи.

20. Издание осуществляет рецензирование всех поступающих в редакцию материалов для их экспертной оценки, в том числе на соответствие профилю журнала.

Все рецензенты являются признанными специалистами по тематикам профиля журнала и имеют в последние 3 года публикации по ним.

В журнале используется «двойное слепое рецензирование» (рецензент не имеет сведений об авторах, а авторы о рецензентах). Статьи, получившие отрицательную рецензию, в журнале не публикуются и обратно авторам не пересылаются. Положительные рецензии могут направляться авторам для доработки статьи или снятия вопросов.

При поступлении в редакцию запроса от автора ему предоставляются копии рецензий или мотивированного отказа в публикации.

Рецензии на неопубликованные статьи хранятся в редакции не менее 5 лет.

21. За публикацию авторских материалов плата не взимается. Редакция не выплачивает авторам гонорар.

22. Для публикации в журнале статья в электронном виде должна быть отправлена на почту tbl2015@yandex.ru.

Дополнительно оригиналы статей могут быть высланы по адресу: 127473, Москва, ул. Достоевского, д. 4, НИИ фтизиопульмонологии (журнал «Туберкулез и болезни легких»).

23. Все авторы должны сообщать, если в их работе имеется финансовый либо другой конфликт интересов, который может повлиять на результаты или интерпретацию их рукописи.

Если конфликт интересов отсутствует, в конце статьи в разделе «Конфликт интересов» указывается «Авторы заявляют об отсутствии у них конфликта интересов».

24. Статьи, оформленные с нарушением вышеизложенных правил, к публикации не принимаются.

Источник

1. Богородская Е. М., Белиловский Е. М., Пучков К. Г., Сенчихина О. Ю., Шамуратова Л. Ф. Заболеваемость туберкулезом детей раннего возраста в городе Москве и факторы, влияющие на нее // Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2014. – № 5. – C. 16-23.

2. Борисов С. Е., Лукина Г. В., Слогоцкая Л. В. и др. Скрининг и мониторинг туберкулезной инфекции у ревматологических больных, получающих генно-инженерные биологические препараты // Туб. и болезни легких. – 2011. – № 6. – C. 42-50.

3. Киселев В. И., Барановский П. М., Пупышев С. А. и др. Новый кожный тест для диагностики туберкулеза на основе рекомбинантного белка ESAT-CFP // Молекулярная медицина. – 2008. – № 4. – C. 4-6.

4. Мейснер А. Ф., Овсянкина Е. С., Стахеева Л. Б. Выявление туберкулеза у подростков в Москве // Пробл. туб. – 2009. – № 1. – С. 40-45.

5. Мейснер А. Ф., Овсянкина Е. С., Стахеева Л. Б. Туберкулиндиагностика у детей. Скрытая (латентная) туберкулезная инфекция? // Пробл. туб. – 2008. – № 6. – С. 29-32.

6. Приказ Минздрава России от 21.03.2003 г. № 109 «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации».

7. Приказ Минздрава России от 21.03.2017 г. № 124н «Об утверждении порядка и сроков проведения профилактических медицинских осмотров граждан в целях выявления туберкулеза».

8. Приказ Минздрава России от 29.12.2014 г. № 951 «Об утверждении методических рекомендаций по совершенствованию диагностики и лечения туберкулеза органов дыхания» / М-во здравоохранения России. – М., 2014. – URL: https://www.garant.ru/products/ipo/prime/doc/70749840/.

9. Приказ Минздравсоцразвития России от 29.10.2009 г. № 855 «О внесении изменения в приложение № 4 к Приказу Минздрава России от 21 марта 2003 г. № 109».

10. Синицын М. В. Совершенствование противотуберкулезной помощи больным ВИЧ-инфекцией в условиях мегаполиса: Автореф. дис. … д-ра мед. наук. – М., 2019. – 47 с.

11. Слогоцкая Л. В. Эффективность кожного теста с аллергеном туберкулезным, содержащим рекомбинантный белок CFP10-ESAT6, в диагностике, выявлении и определении активности туберкулезной инфекции: Автореф. дис. … д-ра мед. наук. – М., 2011. – 45 с.

12. Слогоцкая Л. В., Богородская Е. М., Сенчихина О. Ю., Никитина Г. В. Кудлай Д. А. Формирование групп риска заболевания туберкулезом при различных иммунологических методах обследования детского населения // Рос. педиатрический журнал. – 2017. – № 20 (4). – С. 207-213.

13. Слогоцкая Л. В., Кочетков Я. А., Сенчихина О. Ю., Сельцовский П. П., Литвинов В. И. Динамика кожной пробы (диаскинтест) у детей при оценке активности туберкулезной инфекции // Туб. и болезни легких. – 2011. – № 2. – С. 59-63.

14. Слогоцкая Л. В., Сенчихина О. Ю., Никитина Г. В., Богородская Е. М. Эффективность кожного теста с аллергеном туберкулезным рекомбинантным при выявлении туберкулеза у детей и подростков Москвы в 2013 г. // Педиатрическая фармакология. – 2015. – № 1. – С. 99-103.

15. Фролова К. С., Борисов С. Е., Слуцкая О. М. Туберкулез у больных с воспалительными заболеваниями на фоне лечения ингибиторами ФНО-альфа // Туб. и социально значимые заболевания. – 2018. – № 2. – С. 31-41.

16. Aagaard C., Hoang T., Dietrich J., Cardona P-J., Izzo A., Dolganov G. et al. A multistage tuberculosis vaccine that confers efficient protection before and after exposure // Nat. Med. Nature Publishing Group. – 2011. – Vol. 17. – P. 189-194. https://doi.org/10.1038/nm.2285.

17. Abubakar I., Drobniewski F., Southern J., Sitch A., Jackson C., Lipman M. et al. Prognostic value of interferon-γ release assays and tuberculin skin test in predicting the development of active tuberculosis (UK PREDICT TB): a prospective cohort study // Lancet. Infect. Dis. – 2018. – Vol. 18, № 10. – P. 1077-1087. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(18)30355-4.

18. Affronti L., Lind A., Ouchterlony O. et al. An evaluation of the polyacrylamide gel electrophoresis fractionation method for the production of Mycobacterium tuberculosis skin test preparations. I. Production, physiochemical characterization and serological analyses // J. Biol. – 1986. – Vol. 26. – P. 1-18.

19. Ahmad S. Pathogenesis, immunology, and diagnosis of latent Mycobacterium tuberculosis infection // Clin. Developmen. Immunol. – 2010. – Vol. 2011. – P. 1-17.

20. Aichelburg J., Tittes F., Breitenecker et al. Prognostic value of indeterminate IFN-γ release assay results in HIV-1 infection // J. Clin. Microbiol. – 2012. – Vol. 50, № 8. – P. 2767-2769.

21. Akahoshi T., Sasahara T., Namai R. et al. Production of macrophage inflammatory protein 3a (MIP-3a) (CCL20) and MIP-3a (CCL19) by human peripheral blood neutrophils in response to microbial pathogens in response to microbial pathogens // Infect. Immun. – 2003. – Vol. 71. – P. 524-526.

22. Al-Orainey I. Diagnosis of latent tuberculosis: can we do better? // Ann. Thorac. Med. – 2009. – Vol. 4. – P. 5-9.

23. Andersen P., Andersen A., Sorensen A., Nagai S. Recall of long-lived immunity to Mycobacterium tuberculosis infection in mice // J. Immunol. – 1995. – Vol. 154, № 7. – P. 3359-3372.

24. Andersen P., Munk M., Pollock J., Doherty T. Specific immune-based diagnosis of tuberculosis // Lancet. – 2000. – Vol. 356. – P. 1099-1104.

25. Auguste P., Tsertsvadze A., Pink J. et al. Accurate diagnosis of latent tuberculosis in children, people who are immunocompromised or at risk from immunosuppression and recent arrivals from countries with a high incidence of tuberculosis: systematic review and economic evaluation // Health Technology Assessment. – 2016. – Vol. 20, № 38. – P. 1-678. doi: 10.3310/hta20380.

26. Cardona P. A dynamic reinfection hypothesis of latent tuberculosis infection // Infection. – 2009. – Vol. 37, № 2. – P. 80-86.

27. Chegou N., Black G., Kidd M. et al. Host markers in QuantiFERON supernatants differentiate active TB from latent TB infection: preliminary report // BMC Pulm. Med. – 2009. – Vol. 16. – P. 9-21.

28. Chegou N., Heyckendorf J., Walzl G., Lange C., Ruhwald M. Beyondthe IFN-γhorizon: Biomarkers forimmunodiagnosisof infection with Mycobacterium tuberculosis // Eur. Respir. J. – 2014. – Vol. 43. – P. 1472-1486. https://doi.org/10.1183/09031936.00151413.

29. Chiappini E., Accetta G., Bonsignori F., Boddi V. et al. Interferon-γ release assays for the diagnosis of Mycobacterium tuberculosis infection in children: a systematic review and meta-analysis // Int. J. Immunopathol. Pharmacol. – 2012. – Vol. 14. – P. 557-564.

30. Cole S., Brosch R., Parkhill J. et al. Deciphering the biology of Mycobacterium tuberculosis from the complete genome sequence // Nature. – 1998. – Vol. 393. – P. 537-544.

31. Connell T., Curtis N., Ranganathan S., Buttery J. Performance of a whole blood interferon gamma assay for detecting latent infection with Mycobacterium tuberculosis in children // Thorax. – 2006. – Vol. 61. – P. 616-620.

32. Consensus meeting report: development of a Target Product Profile (TPP) and a framework for evaluation for a test for predicting progression from tuberculosis infection to active disease / World Health Organization. – Geneva, 2017 (WHO/HTM/TB/2017.18). Licence: CC BY-NC-SA3.0 IGO.

33. Cooper A., Mayer-Barber K, Sher A. Role of innate cytokines in mycobacterial infection // Mucosal Immunol. – 2011. – Vol. 4. – P. 252-260.

34. Daniel Т., Anderson P. The isolation by immunoabsorbent affinity chromatography and physiochemical characterization of Mycobacterium tuberculosis antigen // Am. Rev. Respir. Dis. – 1978. – Vol. 117. – P. 533-539.

35. Del Corral H., Paris S., Marin D. et al. IFNgamma response to Mycobacterium tuberculosis, risk of infection and in household contacts of tuberculosis patients in Colombia // PloSOne. – 2009. – Vol. 4, № 12. – Р. e8257.

36. Della Bella C., Spinicci M., Grassi A., Bartalesi F., Benagiano M., Truthmann K. et al. Novel M tuberculosis specific IL-2 ELISpot assay discriminates adult patients with active or latent tuberculosis // PLoS ONE. – 2018. – Vol. 13, № 6. – e0197825.https://doi.org/10.1371/iournal.pone.0197825.

37. Demissie A., Leyten E., Abebe M., Wassie L., Aseffa A., Abate G. et al. Recognition of stage-specific mycobacterial antigens differentiates between acute and latent infections with Mycobacterium tuberculosis // Clin. Vaccine. Immunol. – 2006. – Vol. 13, № 2. – P. 179-186. doi.org/10.1128/CVI.13.2.179-186.2006.

38. Diel R., Goletti D., Ferrara G., Bothamley G., Cirillo D. et al. Interferon-gamma release assays for the diagnosis of latent Mycobacterium tuberculosis infection: a systematic review and meta-analysis // Eur. Respir. J. – 2011. – Vol. 37. – Р. 88-99.

39. Diel R., Loddenkemper R., Niemann S. et al. Negative and positive predictive value of a whole-blood interferon-gamma release assay for developing active tuberculosis: an update // Amer. J. Resp. Crit. Care Med. – 2011. – Vol. 183. – P. 88-95.

40. Diel R., Loddenkemper R., Nienhaus A. Evidence-based comparison of commercial interferon-gamma release assay for detecting active TB: a metaanalysis // Chest. – 2010. – Vol. 137, № 4. – P. 952-968.

41. Dietrich J., Aagaard C., Leah R. et al. Exchanging ESAT6 with ТВ 10.4 in an Ag85B fusion molecule-based tuberculosis subunit vaccine: efficient protection and ESAT6-based sensitive monitoring of vaccine efficacy // J. Immunol. – 2005. – Vol. 174. – P. 6332-6339.

42. Dogra S., Narang P., Mendiratta D. et al. Comparison of a whole blood interferon-gamma assay with tuberculin skin testing for the detection of tuberculosis infection in hospitalized children in rural India // J. Infect. – 2007. – Vol. 54, № 3. – P. 267-276.

43. Doherty Т., Wallis R., Zumla A. Biomarkers for tuberculosis disease status and diagnosis // Curr. Opin. Pulm. Med. – 2009. – Vol. 15, № 3. – P. 181-187.

44. Erkens G., Slump E., Verhagen M. et al. Monitoring latent tuberculosis infection diagnosis and management in the Netherlands // Eur. Resp. J. – 2016. – Vol. 47, № 5. – P. 1492-1501.

45. Esmail H., Barry С., Young, D., Wilkinson R. The ongoing challenge of latent tuberculosis // Phil. Trans. R. Soc. – 2014. – В. 369, 20130437.

46. Fox W., Ellard G., Mitchison D. Studies on the treatment of tuberculosis under taken by the British Medical Research Council tuberculosis units, 1946-1986, with relevant subsequent publications // Int. J. Tuberc. Lung. Dis. – 1999. – Vol. 3. – P. 231-279.

47. Geluk A., van Meijgaarden K., Joosten S., Commandeur S., Ottenhoff T. Innovative strategies to identify M. tuberculosis antigens and epitopes using genome-wide analyses // Front. Immunol. – 2014. – Vol. 5. – P. 1-8.

48. Getahun H., Matteelli A., Chaisson R., Raviglione M. Latent Mycobacterium tuberculosis infection // N. Engl. J. Med. – 2015. – Vol. 372. – P. 2127-2135. doi: org/10.1056/NEJMra1405427 PMID: 26017823.

49. Gourgouillon N., de Lauzanne A., Cottart C.-H. et al. TNF-a/IL-2 ratio discriminates latent from active tuberculosis in immunocompetent children: a pilot study // Pediatr. Res. – 2012. – Vol. 72. – P. 370-374.

50. Guidelines on the management of latent tuberculosis infection / World Health Organization. ‒ Geneva, 2015 (WHO/HTM/TB/2015.01; https://apps.who.int/iris/bitstream/10665/136471/1/9789241548908_eng.pdf?ua=1&ua=1.

51. Hanson C., Sotgiu G., Loddenkemper R. Ensuring that the diagnosis of tuberculosis accelerates progress towards the Millennium Development Goals // Eur. Respir. J. – 2014. – Vol. 44. – P. 1-4.

52. Harboe M., Oettinger T., Wiker H. et al. Evidence for occurrence of the ESAT-6 protein in Mycobacterium tuberculosis and virulent Mycobacterium bovisand for its absence in Mycobacterium bovis BCG // Infect. Immun. – 1996. – Vol. 64. – P. 16-22.

53. Hauck F., Neese B., Panchal A., El-Amin W. Identification and management of latent tuberculosis infection // Am. Fam. Physician. – 2009. – Vol. 79. – P. 879-886.

54. Hawn T., Day T., Scriba T., Hatheril l M., HanekomW., Evans T. et al. Tuberculosis vaccines and prevention of infection / Microbiol. Mol. Biol. Rev. – 2014. – Vol. 78. – P. 650-671. https://doi.org/10.1128/MMBR.00021-14.

55. Hill P., Fox A., Jeffries D. et al. Quantitative T-cell assay reflects infectious load of Mycobacterium tuberculosis in an endemic case contact model // Clin. Infect. Dis. – 2005. – Vol. 40. – P. 273-278.

56. Hinks T., Dosanjh D., Innes J. et al. Frequencies of region of difference 1 antigen-specific but not purified protein derivative-specific gamma interferon-secreting T cells correlate with the presence of tuberculosis disease but do not distinguish recent from remote latent infections // Infect. Immun. – 2009. – Vol. 77, № 12. – P. 5486-5495.

57. Implementing the end TB strategy: the essentials / World Health Organization. – Geneva, 2015 (WHO/HTM/TB/2015.31; https://www.who.int/tb/publications/2015/end_tb_essential.pdf?ua=1, accessed 18 July 2017).

58. Ishigame H., Kakuta S., Nagai T. et al. Differential roles of interleukin-17A and -17F in host defense against mucoepithelial bacterial infection and allergic responses // Immunity. – 2009. – Vol. 30. – P. 108-119.

59. JasenoskyL., Scriba T., Hanekom W., Goldfeld A. T-cells and adaptive immunity to Mycobacterium tuberculosis in humans // Immunol. Rev. – 2015. – Vol. 264. – P. 74-87. https://doi.org/10.1111/imr.12274.

60. Jeong Y., Hur Y.-G., Lee H. et al. Discrimination between active and latent tuberculosis based on ratio of antigen-specific to mitogen-induced IP-10 production // J. Clin. Microbiol. – 2015. – Vol. 53. – P. 504-510.

61. Kamakia R., Kiazyk S., Waruk J., Meyers A., Ochanda J., Ball T., Oyugi J. Potential biomarkers associated with discrimination between latent and active pulmonary tuberculosis // Int. J. Tuberc. Lung.Dis. – 2017. – Vol. 21, № 3. – P. 278-285. https://dx.doi.org/10.5588/ijtld.16.0176.

62. Kim S., Park M., Kim Y. et al. The responses of multiple cytokines following incubation of whole blood from TB patients, latently infected individuals and controls with the TB antigens ESAT-6, CFP-10 and TB7.7 // Scand. J. Immunol. – 2012. – Vol. 76. – P. 580-586.

63. Latent tuberculosis infection: updated and consolidated guidelines for programmatic management / World Health Organization. – Geneva, 2018.

64. Lienhardt C., Fielding K., Hane A. et al. Evaluation of the Prognostic Value of IFN-γ Release Assay and Tuberculin Skin Test in Household Contacts of Infectious Tuberculosis Cases in Senegal // PLoS ONE. – 2010. – Vol. 5, № 5. – Р. e10508. doi:10.1371/journal.pone.0010508.

65. Lin P., Rodgers M., Smith L., Bigbee M., Myers A., Bigbee C. et al. Quantitative comparison of active and latent tuberculosis in the cynomolgus macaque model // Infect. Immun. – 2009. – Vol. 77. – P. 4631-4642. https://doi.org/10.1128/IAI.00592-09.

66. Lindestam A. C., Gerasimova A., Mele F., Henderson R., Swann J., Greenbaum J. et al. Memory T-cells in latent Mycobacterium tuberculosis infection are directed against three antigenicis lands and largely contained in aCXCR3+CCR6+Th1subset // PLoSPathog. – 2013. – Vol. 9. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003130.

67. Lönnroth K., Castro K., Chakaya J., Chauhan L., Floyd K., Glaziou P. et al. Tuberculosis control and elimination 2010-50: cure, care, and social development // Lancet. – 2010. – Vol. 375, № 9728. – P. 1814-1829. doi:10.1016/S0140-6736(10) 60483-7.

68. Lopez-Castejon G., Brough D. Understanding the mechanism of IL-1 b secretion // Cytokine Growth Factor Rev. – 2011. – Vol. 22. – P. 189-195.

69. Machingaidze S., Wiysonge C., Gonzalez-Angulo Y., Hatherill M., Moyo S., Hanekom W., Mahomed H. The utility of an Interferon Gamma release assay for diagnosis of latent tuberculosis infection and disease in children: a systematic review and meta-analysis // Pediatr. Infect. Dis. J. – 2011. – Vol. 14. – P. 694-700.

70. Mack U., Migliori G., Sester M. et al. LTBI: latent tuberculosis infection or lasting immune responses to Mycobacterium tuberculosis? A TBNET consensus statement // Eur. Respir. J. – 2009. – Vol. 33. – P. 956-973.

71. Mandalakas A., Detjen A., Hesseling A., Benedetti A., Menzies D. Interferon-gamma release assays and childhood tuberculosis: systematic review and meta-analysis // Int. J. Tuberc. Dis. – 2011. – Vol. 14. – P. 1018-1032.

72. Marın N., Parıs S., Rojas M., Garcıa L. Functional profile of CD4+ and CD8+ Tcellsin latently infected individuals and patients with active TB // Tuberculosis (Edinb). – 2013. – Vol. 93. – P. 155-166. https://doi.org/10.1016/j.tube.2012.12.002.

73. Matteelli A., Olliaro P., Signorini L. et al. Tolerability of twice-weekly rifabutin-isoniazid combinations versus daily isoniazid for latent tuberculosis in HIV-infected subjects: a pilot study // Int. J. Tuberc. Lung Dis. – 1999. – Vol. 3. – P. 1043-1046.

74. Menzies D., Pai M., Comstock G. Meta-analysis: new tests for the diagnosis of latent tuberculosis infection: areas of uncertainty and recommendations for research // Ann. Intern. Med. – 2007. – Vol. 146. – P. 340-354.

75. Metcalfe J., Everett C., Steingart K. et al. Interferon-gamma release assays for active pulmonary tuberculosis diagnosis in adults in low- and middle-income countries: systematic review and meta-analysis // J. Infect. Dis. – 2011. – Vol. 204 (Suppl. 4). – Р. 1120-1129.

76. Michelsen S., Soborg B., Agger E., Diaz L., Hoff S., Koch A. et al. Host immunity to Mycobacterium tuberculosis and risk of tuberculosis: a longitudinal study among Greenlanders // Vaccine. – 2016. – Vol. 34. – P. 5975-5983. https://dx.doi.org/10.1016/j.vaccine.2016.09.047.

77. Michelsen S., Soborg B., Diaz L., Hoff S., Agger E., Koch A. et al. The dynamics of immune responses to Mycobacterium tuberculosis during different stages of natural infection: A longitudinal study among Greenlanders // PLoSONE – 2017. ‒ Vol. 12, № 6. – e0177906.https://doi.org/10.1371/journal.pone.0177906.

78. Mitchison D. Basic mechanisms of chemotherapy // Chest. – 1979. – Vol. 76, № 6. – P. 771-781.

79. Modlin R., Bloom B. TB or not TB: that is no longer the question // Sci. Transl. Med. – 2013. – Vol. 5. – P. 1-15. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.3007402.

80. Noelle R., Nowak E. Cellular sources and immune functions of interleukin-9 // Nature Rev. Immunol. – 2010. – Vol. 10. – P. 1-12.

81. Nunes-Alves C., Booty M., Carpenter S., Jayaraman P., Rothchild A., Behar S. In search of a new paradigm for protective immunity to TB // Nat. Rev. Microbiol. – 2014. – Vol. 12. – P. 289-299. doi:10.1038/nrmicro3230.

82. Ottenhoff T., Kaufmann S. Vaccines against tuberculosis: Where are we and where do we need to go? // PLoSPathog. – 2012. – Vol. 8. – Р. e1002607. doi:10.1371/journal.ppat.1002607.

83. Pai M. Innovations in tuberculosis diagnostics: progress and translational challenges // EBioMedicine. – 2015. – Vol. 2, № 3. – P. 182-183. doi: 10.1016/j.ebiom.2015.01.018.

84. Pai M. Interferon-gamma assays in the immunodiagnosis of tuberculosis: a systematic review // Lancet. Infectious. Dis. – 2004. – Vol. 4, № 12. – P. 761-776.

85. Pai M., Behr M., Dowdy D., Dheda K., Divangahi M., Boehme C. et al. Tuberculosis // Nat. Rev. Dis. Primers. – 2016. – Vol. 2. – doi: 10.1038/nrdp.2016.76.

86. Pai M., Denkinger C., Kik S., Rangaka M., Zwerling A., Oxlade O. et al. Gamma interferon releaseassays for detection of Mycobacterium tuberculosis infection // Clin. Microbiol. Rev. – 2014. – Vol. 27. – P. 3-20. https://doi.org/10.1128/CMR.00034-13.

87. Pai M., Sotgiu G. Diagnostics for latent TB infection: incremental, not transformative progress // Eur. Respir. J. – 2016. – Vol. 47. – P. 704-706.

88. Penn-Nicholson A., Nemes E., Hanekom W., Hatherill M., Scriba T. Mycobacterium tuberculosis-specific CD4 Tcells are the principal source of IFN-γ in QuantiFERONassays in healthy persons // Tuberculosis. – 2015. – Vol. 95, № 3. – P. 6-7. https://doi.org/10.1016/j.tube.2015.03.002.

89. Rangaka M., Wilkinson K., Glynn J. et al. Predictive value of interferon-γ release assays for incident active tuberculosis: a systematic review and meta-analysis // Lancet. Infect. Dis. – 2012. – Vol. 12. – Р. 45-55.

90. Rothel J, Andersen P. Diagnosis of latent Mycobacterium tuberculosis infection: is the demise of the Mantoux test imminent? Expert Rev. // Anti. Infect. Ther. – 2005 – Vol. 3. – P. 981-993.

91. Santin M., Munoz L., Rigau D., Santin M. Interferon-γ release assays for the diagnosis of tuberculosis and tuberculosis infection in HIV-infected adults: a systematic review and meta-analysis // PLOS One. – 2012. – Vol. 7, № 3. – Р. e32482.

92. Slogotskaya L., Bogorodskaya E., Ivanova D., Sevostyanova T. Comparative sensitivity of the test with tuberculosis recombinant allergen, containing ESAT6-CFP10 protein, and Mantoux test with 2 TU PPD-L in newly diagnosed tuberculosis children and adolescents in Moscow // Plos ONE. – 2018. – Vol. 13, № 12. – Р. e0208705.

93. Slogotskaya L., Litvinov V., Kochetkov Ya., Ovsyankina E., Kudlay D., Seltsovsky P., Nikolenko N., Ivanova D., New skin test with recombinant protein CFP10-ESAT6 in patients (children and adults) with tuberculosis, non-tuberculosis disease and latent TB infection // Eur. Respir. J. – 2012. – Vol. 40, № 56. – P. 416.

94. Slogotskaya L. V., Bogorodskaya E., Sentchichina O., Ivanova D., Nikitina G., Litvinov V., Seltsovsky, P., Kudlay D. A., Nikolenko N., Borisov S. Effectiveness of tuberculosis detection using a skin test with allergen recombinant (CFP-10-ESAT-6) in children // Eur. Respir. J. – 2015. – Vol. 46, № S59. – РА4524.

95. Slogotskaya L. V., Bogorodskaya Е., Ivanova D., Makarova M., Guntupova L., Litvinov, V., Seltsovsky P., Kudlay D. A., Nikolenko N. Sensitivity and specificity of new skin test with recombinant protein CFP10-ESAT6 in patients with tuberculosis and individuals with non- tuberculosis diseases // Eur. Respir. J. – 2013. – Vol. 42, № S57. – P. 1995.

96. Slogotskaya L. V., Litvinov V., Ovsyankina E., Seltsovsky P., Kudlay D. A. Results of Quantiferon-TB GOLD IN-TUBE and skin testing with recombinant proteins CFP-10-ESAT-6 in children and adolescents with TB or latent TB infection // Paediatric. Respir. Rev. – 2013. – Vol. 14, № 2. – P. 65.

97. Steingart К., Dendukuri N., Henry M. et al. Performance of purified antigens for serodiagnosis of pulmonary tuberculosis: meta-analysis // Clin. Vac. Immunol. – 2009. – Vol. 16, № 2. – P. 260-276.

98. Sun L., Xiao J., Miao Q., Feng W., Wu X., Yin Q., Jiao W., Shen C., Liu F., Shen D., Shen A. Interferon gamma release assay in diagnosis of pediatric tuberculosis: a meta-analysis // FEMS Immunol. Med. Microbiol. – 2011. – Vol. 14. – P. 165-173.

99. Tuberculosis: сlinical diagnosis and management of tuberculosis, and measures for its prevention and control / National Сollaborating Сentre for Chronic Conditions, Centre for Clinical Practice at the National Institute for Health and Clinical Excellence. ‒ London: NICE; 2011.

100. Wang S., Diao N., Lu C. et al. Evaluation of the diagnostic potential of IP-10 and IL-2 as biomarkers for the diagnosis of active and latent tuberculosis in a BCG-vaccinated population // PLOS ONE. – 2012. ‒ Vol. 7. ‒ Р. e51338.

101. Wood R., Middelkoop K., Myer L. et al. Undiagnosed tuberculosis in a community with high HIV prevalence: implications for tuberculosis control // Am. J. Respir. Crit. Care. Med. – 2007. – Vol. 175. – P. 87-93.

102. Zak D., Penn-Nicholson A., Scriba T. et al. A blood RNA signature for tuberculosis disease risk: a prospective cohort study // Lancet. – 2016. – Vol. 387. – P. 2312-2322. https://dx.doi.org/10.10l6/S0140-6736(15)013l6-1.

Источник